ICS 65.020.30 B 43 DB22 吉 林 省 地 方 标 准 DB22/T 2089—2019 代替 DB22/T 2089-2014 ,DB22/T 1050-2011 养殖梅花鹿繁殖技术操作规程 Breeding procedure for farmed sika deer 2019 - 10 - 14 发布 吉林省市场监督管理厅 2019 - 11 - 01 实施 发 布 DB22/T 2089—2019 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。 本标准代替 DB22/T 1050-2011《梅花鹿繁育技术规程》和 DB22/T 2089-2014《家养梅花鹿良种繁 育技术操作规程》。本标准以DB22/T 2089-2014为主，整合了 DB22/T 1050-2011的部分内容，与 DB22/T 2089-2014 相比，除编辑性修改外主要技术变化如下： ——增加了“精子密度”术语和定义（见 3.2）； ——修改了术语和定义“精子活力”和“试情法”（见 3.1 和 3.3，DB22/T 2089-2014 中的 3.3 和 3.6）； ——删除了“成年公鹿”、 “成年母鹿”、 “受胎率”和“繁殖成活率”术语和定义（见 DB22/T 2089-2014 中的 3.1、3.2、3.4 和 3.5）； ——删除了“繁殖生理”（见 DB22/T 1050-2011 中的 2）； ——将原标准 DB22/T 1050-2011“选种标准”与 DB22/T 2089-2014“种鹿评定”整合变为新标准 的“选种”（见 4）； ——修改了“繁殖性能”指标（见 4.1.3 和 4.2.2，DB22/T 2089-2014 中的 4.1.2 和 4.2.2）； ——增加了“配种前准备”（见 5）； ——删除了“配种期饲养管理”（见 DB22/T 2089-2014 中的 5 和附录 A）； ——修改了“母鹿发情鉴定”、 “直肠把握法”和“开膣器输精法” （见 6 和 7.2.4.2，DB22/T 1050-2011 中的 4.2.4 和 DB22/T 2089-2014 中的 6）； ——删除了“精液分级标准”（见 DB22/T 2089-2014 中的 6.3.3.2）； ——删除了“繁殖技术要求”部分的悬置段（见 DB22/T 2089-2014 中的 6）； ——删除了“标识”（见 DB22/T 2089-2014 中的 7.1）； ——删除了“记录”中附录的“鹿只动态记录”、“梅花鹿采食量记录”和“收茸记录”（见 DB22/T 2089-2014 中的 7.2）； ——将原标准 DB22/T 1050-2011“配种方式、方法”与 DB22/T 2089-2014“配种方式”整合变为 新标准的“配种方法”（见 7）。 本标准由吉林省畜牧业管理局提出并归口。 本标准起草单位：吉林农业大学、中国农业科学院特产研究所、长春市鹿乡华泰生物科技有限公司、 长春市双阳区博文鹿业良种繁育有限公司、吉林省双阳鹿业良种繁育有限公司。 本标准主要起草人：鞠贵春、张爱武、刘忠军、卫功庆、魏海军、闫华、桂宝玉、吕铁峰。 本标准代替了DB22/T 1050-2011 和 DB22/T 2089-2014。 DB22/T 1050-2011 历次版本发布情况为： ——DB22/T 1050-2004； ——DB22/T 1050-2011。 DB22/T 2089-2014 历次版本发布情况为： ——DB22/T 2089-2014。 I DB22/T 2089—2019 养殖梅花鹿繁殖技术操作规程 1 范围 本标准规定了养殖梅花鹿的选种、配种前准备、母鹿发情鉴定、配种方法和记录。 本标准适用于养殖梅花鹿繁殖。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 GB/T 6935 中国梅花鹿种鹿 DB22/T 1048 梅花鹿种质公鹿 DB22/T 1049 梅花鹿种质母鹿 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 精子活力 sperm motility 精液中呈直线前进运动的精子数占总精子数的比值，小数点后保留一位。 3.2 精子密度 sperm concentration 每毫升精液中所含的精子数。 3.3 试情法 heat detection using teaser stag 在发情季节，用公鹿试探母鹿是否发情的方法。 4 选种 4.1 成年公鹿 4.1.1 外貌特征 应符合 DB22/T 1048 的要求。 4.1.2 产茸性能 应符合 GB/T 6935 二级或二级以上的要求。 4.1.3 繁殖性能 1 DB22/T 2089—2019 生殖器官发育良好，体质健壮，性机能旺盛，配种能力强，无恶癖。鲜精活力≥0.7，冻精活力≥ 0.3。种用年限 5 年～7 年。 4.1.4 种公鹿 应符合 GB/T 6935 特级或一级的要求。 4.2 成年母鹿 4.2.1 外貌特征 应符合 DB22/T 1049 的要求。 4.2.2 繁殖性能 健康、母性强、性情温顺，生殖系统及乳腺发育良好，发情表现明显，泌乳能力强，繁殖能力良好。 种用年限 5 年～8 年。 4.2.3 种母鹿 应符合 GB/T 6935 特级或一级的要求。 5 配种前准备 5.1 制定配种计划 根据品质、系谱、等级、年龄、育种或生产目标做好选配计划。 5.2 场地准备 5.2.1 5.2.2 5.3 检修圈舍。配种前对全场圈舍进行检修、加固。 圈舍消毒。在配种前进行圈舍全面消毒。 组群 母鹿配种前根据生产目标和亲缘关系组群，组成育种核心群、生产群，每群 15 头～20 头。 5.4 种鹿检查 5.4.1 5.4.2 6 配种公母鹿、引种或采精公鹿应检查确认无规定疫病。 参配公鹿应提前采精检查精液品质，应符合 4.1.3 的要求。 母鹿发情鉴定 6.1 外部观察法 6.1.1 发情初期 兴奋不安，食欲下降，摆尾游走，不接受公鹿爬跨。 6.1.2 2 发情期 DB22/T 2089—2019 急骤走动摆尾，排尿频繁，求偶明显，嗅、蹭公鹿脸，愿意接受爬跨，有时爬跨其它母鹿。 6.1.3 发情末期 行为逐渐转为平静，不再接受爬跨，有时甚至回头扒咬公鹿。 6.2 试情法 6.2.1 方法 将试情公鹿放入母鹿群中，依据是否接受公鹿爬跨判断发情状态。 6.2.2 判定 接受公鹿爬跨，则可判定为已发情。 7 配种方法 7.1 自然交配 7.1.1 单公群母一配到底法 将 1 头种公鹿放入 15 头～20 头的母鹿群中，任其自由交配，在整个配种期内不更换种公鹿。 7.1.2 单公群母适时替换种公鹿配种法 将 1 头种公鹿放入 15 头～20 头的母鹿群中，在配种期内发现种公鹿配种能力下降时更换种公 鹿。 7.1.3 单公群母定时放对法 在配种期内，每天定时向母鹿群中放入 1 头种公鹿，当确认无发情母鹿后，及时将种公鹿拨出。 7.1.4 试情配种法 将试情公鹿放入母鹿群中，当确认某头母鹿发情，将已发情的母鹿拨出，与选择的公鹿自然交配或 进行人工输精。 7.2 人工授精 7.2.1 采精 采用电刺激方法采精，具体操作如下： a) 公鹿保定。将采精公鹿用麻醉药物麻醉，使鹿体呈侧卧姿势； b) 公鹿处置。排除宿粪，剪掉包皮口周围的长毛，先用清水冲洗包皮腔，再用生理盐水冲洗干净， 然后用灭菌纱布擦干包皮内部及龟头，将阴茎导出，用纱布固定，对准集精杯； c) 采精。将探棒用水沾湿徐徐插入直肠，深度 25 cm 左右，并使探棒电极一侧紧贴直肠腹面， 将电压调至零位，然后打开电源开关，使电压由低向高逐档升高（电压 1 v～6 v，频率 50 hz）， 并在每档通、断交替刺激 5 次～10 次，每次通电 5 s，间断 2 s～3 s，当电压升至射精档 3 DB22/T 2089—2019 位时，在该档继续交替刺激直至射精完毕，也可再升一档进行刺激，使其充分射精，精液用集 精杯接取。 7.2.2 精液品质检查 7.2.2.1 采精量 采用电刺激法 1 次可采精 1 ml～2 ml。 7.2.2.2 色泽、气味 正常精液为乳白色或乳黄色，微腥。浅黑色、绿色、带血或被尿液污染的精液不能使用。 7.2.2.3 精子活力 在 20 ℃以上的室内，用 160 X～400 X 显微镜检查。用新鲜精液输精时，精子活力应达到 0.7 以 上。用冷冻精液输精时，解冻后精子活力应达到 0.3 以上。 7.2.2.4 精子密度 利用精子密度仪或显微镜判定。根据视野中精子的稠密程度将精子密度分为密、中、稀三级。 7.2.3 精液处理 7.2.3.1 精液稀释 7.2.3.1.1 鲜精液稀释液配方见表 1。 表1 鲜精液稀释液配方 成分 数量 Tris/g 2.43 柠檬酸/g 1.35 果糖/g 1 蒸馏水/ml 100 7.2.3.1.2 冷冻精液稀释液配方见表 2。 表2 冷冻精液稀释液配方 成分 数量 鲜精稀释液/ml 80 卵黄/ml 20 甘油/% 4～8 青霉素/IU 20 万 链霉素/IU 20 万 4 DB22/T 2089—2019 7.2.3.1.3 7.2.3.2 根据精液的精子密度和活力情况逐渐稀释，保证每个细管的有效精子数不低于 4000 万。 冷冻保存 7.2.3.2.1 细管准备 细管分 0.5 ml 或 0.25 ml 两种，细管上应印有单位代号、品种、编号、生产日期。 7.2.3.2.2 分装 用分装机或手工分装，用聚乙烯醇或玻璃珠封口，在操作时应注意快速、准确，确保无污染。 7.2.3.2.3 平衡 将分装好的细管用 2 层毛巾或 4 层纱布包好，放入 4 ℃冰箱中平衡 2 h～4 h。 7.2.3.2.4 冷冻 将平衡后的细管放入筛网中，在冷冻罐口处用液氮蒸气冷冻 6 min～8 min，然后筛网距液氮面 2 cm 左右，继续冷冻 5 min 后浸入液氮中保存。 7.2.4 输精 7.2.4.1 鲜精稀释后应 6 h 内输完。冷冻精液应将冻精细管迅速从液氮内取出，投入到 37 ℃～38 ℃ 温水中，8 s～10 s 后镜检，精子活力达到 0.3 以上可输精。 7.2.4.2 输精方法为： a) 开膣器输精。将细管装入输精枪内，借助灯光通过开