ICS 65.020.30 B 44 DB15 内 蒙 古 自 治 区 地 方 标 准 DB15/T 1900—2020 过氧化氢诱导奶牛乳腺上皮细胞氧化损伤 模型构建技术规程 Technical regulations for establishment of hydrogen peroxide-induced oxidative damage model of bovine mammary epithelial cells 2020-06-10 发布 内蒙古自治区市场监督管理局 2020-07-10 实施 发 布 DB15/T 1900—2020 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。 本标准由内蒙古自治区农牧业科学院提出。 本标准由内蒙古自治区畜牧业标准化技术委员会（SAM/TC 19）归口。 本标准起草单位：内蒙古自治区农牧业科学院。 本标准主要起草人员：马燕芬、赵磊、吴志红、宋利文、凤英、张春华、乃门塔娜、羿静、宝华、 杜瑞平、高民、米丽。 I DB15/T 1900—2020 过氧化氢诱导奶牛乳腺上皮细胞氧化损伤模型构建技术规程 1 范围 本标准规定了过氧化氢诱导奶牛乳腺上皮细胞氧化损伤模型的构建方法。 本标准适用于采用过氧化氢诱导奶牛乳腺上皮细胞产生氧化损伤模型的构建。 2 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 2.1 原代细胞培养 primary cell culture 将乳腺上皮细胞在模拟体内生存环境中进行培养，使细胞生长增殖达到可传代状态的培养方法。 3 工作区条件 工作区由准备室、缓冲间、无菌室、细胞保存室组成。 4 主要仪器、设备及耗材 4.1 主要仪器、设备 超净工作台、CO2培养箱、倒置显微镜、4 ℃离心机、4 ℃冰箱、-20 ℃冰箱、0.22 μ m过滤器、 80目滤网。 4.2 主要耗材 2 25 cm 细胞培养瓶、90 mm细胞培养皿、15 mL离心管、300 mL烧杯、250 mL蓝口瓶、1.5 mL Eppendof 管、2 mL冻存管、6孔板、24孔板、96孔板、10 μ L-5 mL移液枪及枪头、瓷盘、镊子、剪刀、贮液瓶。 5 主要试剂及配制 5.1 主要试剂 DMEM/F12培养基、10 %胎牛血清、双抗、5 %胰岛素转铁蛋白硒钠、氢化可的松、两性霉素B、表皮 生长因子、催乳素、L-谷氨酰胺、PBS缓冲液（pH7.4）、0.5 % Ⅱ型胶原酶、10 %二甲基亚砜（DMSO）、 30 %过氧化氢、甲醇、高压灭菌超纯水、0.4 %台盼蓝、75 %酒精、新洁尔灭、0.25 %胰酶、丙酮、10 % 山羊血清、兔抗细胞角蛋白（cytokeratin）18单克隆抗体、山羊抗兔免疫球蛋白G、Alexa Fluor488、 DAPI染液、四氮唑蓝盐化合物（MTS）、细胞裂解液、活性氧（ROS）试剂盒、丙二醛（MDA）试剂盒、 1 DB15/T 1900—2020 超氧化物歧化酶（SOD）试剂盒、谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）试剂盒、过氧化氢酶（CAT）试剂盒、 谷胱甘肽巯基转移酶（GST）试剂盒、乳酸脱氢酶（LDH）试剂盒。 5.2 培养基配制 5.2.1 完全培养基（生长培养基，按配 100 mL 计算） 将10 %胎牛血清10 mL、双抗1 mL、5 %胰岛素转铁蛋白硒钠0.5 mL、100 μ g/mL氢化可的松100 µL、 100 μ g/mL两性霉素B 100 µL、10 ng/mL表皮生长因子10 µL、50 μ g/mL催乳素50 µL、200 mmol/L L谷氨酰胺1.5 mL加入86.74 mL的DMEM/F12培养基中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 5.2.2 无血清培养基（饥饿培养基，按配 100 mL 计算） 将双抗1 mL、5 %胰岛素转铁蛋白硒钠0.5 mL、100 μ g/mL氢化可的松100 µL、100 μ g/mL两性霉 素B 100 µL、10 ng/mL表皮生长因子10 µL、50 μ g/mL催乳素50 µL、200 mmol/L L-谷氨酰胺1.5 mL 加入96.74 mL的DMEM/F12培养基中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 5.2.3 终止培养基（按配 100 mL 计算） 将10 %胎牛血清10 mL加入90 mL DMEM/F12培养基中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 5.3 试剂配制 5.3.1 氢化可的松（100 μg/mL） 将100 μ g氢化可的松溶于1 mL无水乙醇中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.2 两性霉素 B（100 μg/mL） 将1 mg两性霉素溶于10 mL无菌超纯水中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.3 表皮生长因子（10 ng/mL） 将0.2 mg表皮生长因子溶于20 mL DMEM/F12培养基中，充分混匀，配制成10 μ g/mL的表皮生长因 子浓贮，取100 μ L 10 μ g/mL浓贮溶于100 mL DMEM/F12培养基中，即为10 ng/mL表皮生长因子工作液， 0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.4 催乳素（50 μg/mL） 将250 IU的催乳素（按25 IU/mg转换）溶于1 mL DMEM/F12培养基中，配制成浓度为10 mg/mL的浓 贮，取100 μ L 10 mg/mL浓贮溶于20 mL DMEM/F12培养基中，即为50 μ g/mL催乳素工作液，0.22 μ m 滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.5 L-谷氨酰胺（200 mmol/L） 称取2.923 g谷氨酰胺溶于100 mL DMEM/F12培养基中，即为200 mmol/L的谷氨酰胺，0.22 μ m滤器 过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.6 含 1 %双抗的 PBS 将5 mL双抗加入500 mL PBS中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 2 DB15/T 1900—2020 5.3.7 含 3 %双抗的 PBS 将15 mL双抗加入500 mL PBS中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 5.3.8 Ⅱ型胶原酶（0.5 %） 称取100 mg 0.5 %Ⅱ型胶原酶粉末溶于20 mL PBS中，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存。 5.3.9 细胞冻存液（100 mL） 将20 mL 10 %胎牛血清和10 mL 10 %二甲基亚砜加入到70 mL完全培养基中，0.22 μ m滤器过滤， 密封分装，4 ℃保存。 5.3.10 过氧化氢甲醇（3 %） 将30 %过氧化氢和甲醇按1：9的比例稀释，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃避光保存，现用 现配。 5.3.11 过氧化氢原液配制（1 mol/L） 在1 mL H2O2中加入8 mL高压灭菌超纯水稀释到9 mL，配制成浓度为1 mol/L（1000mmol/L）的H2O2 原液，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，4 ℃保存。 注：30 % H2O2浓度约为9 mol/L。 5.3.12 过氧化氢工作液配制（600 μmol/L） 在0.006 mL 1000 mmol/L 的H2O2原液中加入9.994 mL高压灭菌超纯水稀释到10 mL，即为600 μ mol/L H2O2工作液，0.22 μ m滤器过滤，-20 ℃保存，每次换液时现配。 5.3.13 过氧化氢诱导培养基配制（600 μmol/L，按 20 mL 计） 将12 µL的1000 mmol/L的H2O2原液加入到19.98 mL的无血清培养基中，即为600 μ mol/L H2O2诱导培 养基，0.22 μ m滤器过滤，密封分装，-20 ℃保存，每次换液时现配。 5.3.14 一抗 将兔抗细胞角蛋白（cytokeratin）18单克隆抗体与PBS按1：200比例稀释而成，0.22 μ m滤器过滤， 密封分装，-20 ℃保存。 5.3.15 二抗 采用Alexa Fluor488标记的山羊抗兔免疫球蛋白G，-20 ℃保存。 6 奶牛乳腺上皮细胞体外培养 6.1 奶牛乳腺样品采集 商业屠宰场采集健康奶牛乳腺组织，选取切开后乳腺深层组织内无出血点，切面呈肉白色，能见白 色乳汁的健康奶牛乳腺组织约200 g，立即装入干净样品袋中带回实验室。 3 DB15/T 1900—2020 6.2 奶牛乳腺样品处理 6.2.1 在操作台前点燃酒精灯，取 250 mL 贮液瓶，装入约 200 mL 含 3 %双抗的 PBS 溶液。 3 6.2.2 将采集的乳腺样品放入已灭过菌的瓷盘里，用镊子和剪刀剪掉组织外层，于深层处选取 1 cm 大小的组织块若干块（注意避开导管和结缔组织）。 6.2.3 放入贮液瓶中浸泡 10 min。 6.3 奶牛乳腺上皮细胞原代培养 6.3.1 准备好需要拿到培养间的物品：含 1 %双抗的 PBS，含 3 %双抗的 PBS，75 %酒精，DMEM/F12 培 2 养基，0.5 %Ⅱ型胶原酶，15 mL 离心管，90 mm 细胞培养皿，25 cm 细胞培养瓶。 6.3.2 关闭超净台紫外照射灯，打开超净台并点燃酒精灯。 6.3.3 将浸泡后的乳腺组织移至超净台内，依次用含 3 %双抗的 PBS 清洗三遍，75 %酒精浸泡 30 s， 含 1 %双抗的 PBS 清洗三遍，然后将乳腺组织放入一无菌 90 mm 细胞培养皿中，用眼科镊子和剪刀剪去 3 组织块表层，剪取深层腺泡约 1 mm 的乳腺组织放入另一无菌 90 mm 细胞培养皿中，用眼科剪刀将乳腺 组织块剪成糊状。 6.3.4 将呈糊状的乳腺组织块吸移至 15 mL 离心管中，用适量含 1 %双抗的 PBS 清洗 90 mm 细胞培养 皿 3 次，液体转入 15 mL 离心管中，1300 r/min 离心 5 min。 6.3.5 弃掉上清液，向离心管中加入等体积的 0.5 %Ⅱ型胶原酶。 6.3.6 盖好离心管盖子，放入 37 ℃水浴锅消化 1 h，消化过程中每隔 20 min 轻轻摇晃离心管。 6.3.7 消化完毕后，将消化后的组织块用 80 目滤网过滤（滤网应先用含 1 %双抗的 PBS 润湿）到灭菌 烧杯里，用含 1 %双抗的 PBS 将离心管润洗 3 遍后，经滤网过滤到烧杯里。 6.3.8 用 5 mL 枪头吸取滤液于 15 mL 离心管（根据滤液的多少来决定个数）内，用含 1 %双抗的 PBS 清洗烧杯后，将液体也转移到离心管中，1300 r/min 离心 5 min。 6.3.9 弃掉上清液，分别向