ICS 67.050 SN CCS X 04 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 SN/T 0500—2022 代替SN0500—1995 出口水果中多果定残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 Determination of dodine residue in fruits for export LC-MS/MS Method 2022-10-01实施 2022-03-14发布 中华人民共和国海关总署 发布 SN/T0500—2022 前言 本文件按照GB/T1.1一2020《标准化工作导则 第1部：标准化文件的结构和起草规则》和 SN/T0001一2016给出的规定起草。 本文件代替SN0500—1995《出口水果中多果定残留量检验方法》，与SN0500—1995相比，主要修 改如下： 对原文件的结构进行了修改； 采用液相色谱-质谱/质谱法代替原文件的分光光度法； 修改了方法的定量限。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任 本文件由中华人民共和国海关总署提出并归口。 本文件起草单位：中华人民共和国广州海关 本文件主要起草人：张思群、丁博、曾广丰。 本文件及其所代替文件的历次版本发布情况为： 1995年首次发布为SN0500—1995； 一本次为第一次修订。 SN/T 0500—2022 出口水果中多果定残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 1范围 本文件规定了出口水果中多果定残留量的液相色谱-质谱/质谱测定方法。 本文件适用于苹果、柑橘、香蕉、葡萄、梨、樱桃、油桃、草莓、牛油果等出口水果中多果定残留量的 测定。 2规范性文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文 件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于 本文件。 GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法 3术语和定义 本文件没有需要界定的术语和定义 4方法提要 试样中残留的多果定经甲醇提取，弱阳离子固相萃取柱净化后，用液相色谱-质谱/质谱法测定，外 标法定量。 5试剂和材料 除另有规定外，所用试剂均为分析纯，水为GB/T6682中规定的一级水。 信息服务平 5.1甲醇：色谱纯。 5.2乙腈：色谱纯。 5.3甲酸：色谱纯。 5.4无水硫酸钠。 5.51%甲酸-甲醇溶液：量取5.0mL甲酸，用甲醇定容至500ml 5.6多果定标准品（Dodine），C1,H.N，O，，CAS号：2439-10-3，纯度大于等于98%。 5.7标准储备液：准确称取25mg（精确到0.1mg）多果定标准品，用甲醇溶解并转移至25mL容量瓶 中定容，配制成浓度为1.0mg/mL的标准储备溶液，一18℃避光保存，有效期为6个月。 5.8标准中间液：准确移取0.25mL的多果定标准储备液（5.7）于25mL容量瓶中，用甲醇定容，配制 成浓度为10.0μg/mL的标准中间液，一18℃避光保存，有效期为1个月。 5.9标准工作液：准确移取一定体积的标准中间液（5.8），用1%的甲酸-甲醇溶液分别稀释成 1.00μg/L、2.00μg/L、5.00μg/L、10.0μg/L、20.0μg/L、50.0μg/L的系列浓度,现用现配。 1 SN/T 0500—2022 5.10弱阳离子固相萃取柱（WCX，硅胶键合醋酸基，60mg，3mL）。 5.11 微孔滤膜：有机相，0.22μm。 6仪器和设备 6.1 液相色谱-串联质谱仪：配有电喷雾离子源（ESI）。 6.2分析天平：感量分别为0.01g和0.1mg。 6.3涡旋混合器。 6.4均质机。 6.5高速离心机：10000r/min。 7试样制备和保存 取代表性样品约500g用均质机均质，装入洁净容器，密封并标记。 试样置于一18℃冷冻保存。 在抽样及制样过程中应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。 7分析步骤 7.1样品处理 7.1.1提取 版文本为准 称取5.0g试样（精确到0.01g)置于50mL离心管中，加入4g无水硫酸钠，加人20mL甲醇在涡 旋混合器上提取20min，以10000r/min转速离心5min，转移上清液至25mL容量瓶中，用甲醇定容。 7.1.2净化 弱阳离子交换柱先分别用2mL甲醇、2mL水活化，然后取1mL提取液过柱，用3mL水和3mL 甲醇淋洗后，用5mL1%甲酸-甲醇洗脱并定容至5mL，过0.22um有机滤膜，待上机测定。 业标准信 7.2测定 7. 2. 1 液相色谱条件 液相色谱测定条件如下： 色谱柱：Cs柱，3.0mm（内径）×150mm,粒径2.7μm，或性能相当者； a) 服务平台 b) 流动相：0.2%甲酸水溶液和乙（体积比30：70），等度洗脱； c) 流速：0.4mL/min； 进样量：5μL； e) 柱温：30℃。 7.2.2质谱条件 质谱测定条件如下： a) 离子化模式：电喷雾正离子模式（ESI+）； b) 检测方式：多反应监测（MRM）； c) 其他参考质谱条件参见附录A。 2 SN/T 0500—2022 7.2.3定性测定 时间与多果定标准品相差在土5%以内，并且在扣除背景后所选择的两对离子对与浓度相当标准溶液的 相对丰度一致，其相对丰度允许偏差不超过表1的范围，则可判定样品中存在多果定。 表1定性确证时相对离子丰度的最大允许误差 相对离子丰度/% >50 >20~50 >10~20 ≤10 允许的相对误差/% ±20 ±25 ±30 ±50 7.2.4定量测定 按照液相色谱-质谱/质谱条件测定样品和标准工作溶液，标准曲线法测定样液中多果定的含量。 样品中被测物的量应在标准曲线范围之内，如果含量超出标准曲线范围，应适当稀释至标准曲线范围之 内进行检测。多果定标准溶液的提取离子流图参见附录B 7.3空白试验 除不称取试样外，均按上述步骤进行。 8结果计算和表述 版文本为准 采用外标法定量，用色谱数据处理软件或按式（1）计算样品中待测物残留量。计算结果需扣除空 白值。 AXc×V×1000 AsXmX1 000 式中： 试样中多果定残留量，单位为毫克每千克（mg/kg）； X A 样液中多果定的峰面积； 标准工作溶液中多果定的浓度，单位为微克每升（μg/L）； c V 样液最终定容体积，单位为升（L）； As 标准工作溶液中多果定的峰面积； m 9定量限和回收率 9.1定量限 本方法的定量限为0.0250mg/kg。 9.2回收率 本标准方法分别以苹果、柑橘、香蕉、葡萄、梨、樱桃、油桃、草莓、牛油果为空白样品基质，进行4个 浓度水平的添加回收试验，每个浓度水平进行6次重复实验，测得各种基质多果定的回收率范围参见附 录C。 3